1．RUT：

敏感度75%～100%，特异度84%～100%^[5]，其操作简便、费用低、省时，但检测结果易受试剂pH值、取材部位、组织大小、细菌量及分布、观察时间、环境温度和胃炎严重程度等因素影响，故存在结果假阴性的情况。同时取2块组织进行检测(胃窦和胃体各1块)可以提高检测敏感性。

2．组织学检测：

敏感度66%～100%，特异度94%～100%^[5]，检测Hp的同时，可对胃黏膜病变进行诊断(HE染色)，是唯一能确诊Hp感染同时判断其损伤程度的方法，但Hp在胃内呈灶性分布，其检出率易受取材部位及大小、细菌数量及一些疾病，如消化道出血、胃黏膜萎缩等的影响。

3．Hp培养：

敏感度55%～96%，特异度100%^[5]，是诊断Hp现症感染的"金标准" ，Hp培养可进行药敏试验和细菌学研究。但复杂、耗时，需一定实验室条件，标本转送培养需专门的转送液并保持低温。

4．UBT：

敏感度75%～100%，特异度77%～100%^[5]，可反映全胃Hp感染状况，不会出现因细菌灶性分布而造成的假阴性结果。¹³C尿素呼气试验无放射性，适用于儿童，可用于诊断Hp现症感染，还可用于治疗后的复查。

5．SAT：

敏感度97%～98%，特异度95%～100%^[5]，检查时不需要口服任何试剂，是唯一一项诊断准确性不受患儿年龄影响的无创性检测方法。该方法的准确性可与UBT相当^[6]。可用于Hp治疗前诊断和治疗后复查。

6．血清抗体检测：

敏感度50%～100%，特异度70%～98%^[5]，检测的抗体反映一段时间内Hp感染情况，Hp根除后血清抗体可以维持很久，因此不能用于诊断现症感染，多用于流行病学调查。

7．分子生物学检测：

可用于检测粪便或胃黏膜组织等标本。其中聚合酶链反应试验(polymerase chain reaction，PCR)应用较为广泛。目前主要用作分子生物学及分子流行病学研究，尤其适用于菌株的DNA分型、耐药基因突变的检测。

1．根除Hp的常用药物：

2．根除Hp的治疗方案：

3．根除Hp的个体化治疗：

个体化治疗是针对Hp根除治疗失败的患儿，分析其失败原因和提出处理方法。具体建议如下：

(1)了解患儿以前治疗时用药的依从性，判断治疗失败的原因。

(2)有条件者根据药敏试验结果选择有效抗生素，无条件者用分子检测方法(如原位免疫荧光杂交)检测克拉霉素的耐药性^[6]。

(3)无条件行药敏试验，再次治疗时应尽量避免重复使用初次治疗时的抗生素或加用铋剂，对青霉素过敏的患儿可供选择的药物有限，能否选用氟喹诺酮类等药物，需根据儿童的年龄来考虑使用。

(4)延长治疗时间或加大药物剂量^[1,6](建议不超过药物说明书用量)。

(5)抑酸剂在根除治疗中起重要作用，但PPI代谢的CYP2C19基因多态性会影响根除效果。因此，可选择作用稳定、疗效高、受CYP2C19基因多态性影响较小的PPI，如埃索美拉唑，可提高根除率。

(6)对多次治疗失败者，可考虑停药3个月或半年，使细菌恢复一定的负荷量，以便提高下一次治疗时Hp的根除率。

(7)根除治疗失败，但症状缓解者，可暂缓再次根除治疗。

4．根除Hp的辅助治疗：

国内外成人Hp共识和Meta分析均指出联合应用微生态制剂可辅助治疗Hp感染^[6,7,8,9]，减少Hp根除过程中的不良反应，提高患者的依从性。微生态制剂是否可以提高儿童Hp的根除率，目前没有明确的结论。

5．根除Hp的疗效判断：

应在根除治疗结束至少4周后进行，即使患儿症状消失也建议复查，首选尿素呼气试验。符合下述三项之一者可判断为Hp根除：(1)UBT阴性；(2)SAT阴性；(3)基于胃窦、胃体两个部位取材的RUT均阴性。

(黄瑛　执笔)